大腸桿菌蛋白表達原理方法和種類

大腸桿菌蛋白表達原理
 
1. 表達載體
 
小型環(huán)狀DNA可以自我復制。完整的質粒載體必須具有復制起點，啟動子，插入的目的基因，篩選標記和終止子。根據表達蛋白質的類型可分為單純表達載體和融合表達載體，前者是在目標蛋白的N端/C端添加特殊的序列，從而促進蛋白的可溶性和正確折疊，方便目的蛋白的快速親和純化，或者目標蛋白的表達定位。His和GST-是常使用的融合標簽。
 
2. 表達宿主菌
 
表達蛋白質的生物即為大腸桿菌。宿主細菌的選擇主要基于宿主細菌的特征和靶蛋白的特征。例如，靶蛋白需要形成二硫鍵�？梢赃x擇Origami 2系列，Origami可以顯著增加在細胞質中形成二硫鍵的可能性，并提高蛋白質的溶解度和活性。
 
大腸桿菌表達系統(tǒng)種類
 
1. T7大腸桿菌表達
 
T7大腸桿菌表達表達目的基因的水平較高。但是如果目的基因對大腸桿菌有毒性，則會影響細胞的生長。T7大腸桿菌表達是用T7啟動子和T7 噬箘體轉錄體系的元件構建的表達系統(tǒng)。T7 RNA聚合酶是高活性RNA聚合酶，mRNA的合成速度是大腸桿菌中RNA聚合酶的五倍，并且某些不能被大腸桿菌RNA聚合酶轉錄的序列也可以被轉錄，因此T7RNA聚合酶和T7噬箘體啟動子的存在的情況下，大腸桿菌本身的轉錄系統(tǒng)競爭不過T7噬箘體轉錄體系，最終受 T7噬箘體啟動子控制蛋白轉錄。
 
2. Lac和Tac大腸桿菌表達系統(tǒng)
 
Lac和Tac大腸桿菌表達系統(tǒng)是一種基于大腸桿菌紫膠操縱子調控機制設計和構建的表達系統(tǒng)。紫膠操縱子具有多順反子結構。在沒有誘導劑的情況下，負調控因子lacI基因產物與啟動子下游的操縱基因緊密結合，并開始組織轉錄。在誘導物IPTG的存在下，與阻遏物結合后，與操縱子結合的能力降低并解離，從而激活了lac操縱子的轉錄。用tac啟動子構建的表達系統(tǒng)稱為Tac表達系統(tǒng)。為了能夠嚴格調節(jié)Lac和Tac表達系統(tǒng)，將能夠產生過量lacI阻遏蛋白的lacI基因的突變型lacIq應用于表達系統(tǒng)。然而，當使用高拷貝復制子構建表達載體時，仍然觀察到更高水平的背景轉錄，并且將lacIq基因插入表達載體中以確保更多的lacI阻遏蛋白產生。
 
目前，許多商業(yè)表達載體是在Lac和Tac表達系統(tǒng)的基礎上改進和發(fā)展的。 Lac和Tac表達系統(tǒng)使用IPTG誘導轉錄，但是由于IPTG本身的毒性，從安全角度考慮，它不適合用于醫(yī)學目的表達和制備重組蛋白。一些國家還規(guī)范了供人類使用的重組蛋白的生產。 IPTG無法用于生產過程，因此認為阻遏蛋白lacI的溫度敏感突變體lacI（ts）可以應用于Lac和Tac表達系統(tǒng)。這些突變基因可以插入表達載體或整合到染色體中以實現lac。tac啟動子的轉錄受溫度嚴格調節(jié)，在較低溫度（30°C）下受到抑制，而在較高溫度（42°C）下開放。乳糖也可以代替IPTG誘導劑使用，但是其效率受多種因素的影響，并且受限制，因此乳糖導的有效劑量比IPTG高得多，乳糖本身可以被大腸桿菌作為碳源代謝。乳糖的存在還可以引起細菌的生理和生長特性的變化。
 
3. PL和PR大腸桿菌表達系統(tǒng)
 
以λ噬箘體早期轉錄啟動子PL、PR為核心構建的系統(tǒng)稱為PL和PR大腸桿菌表達系統(tǒng)。啟動子PL、PR具有很強的啟動轉錄能力，利用它們來構建表達載體在大腸桿菌表達系統(tǒng)發(fā)展初期就已被提出來并加以研究。這種表達系統(tǒng)基于溫度敏感突變體cl857的基因產物來調控PL、PR啟動子的轉錄，該基因產物在較低溫度（30℃）時以活性形式存在，在較高溫度（42℃）時失活。這種表達載體在普通大腸桿菌中相當不穩(wěn)定，這是因為菌體中沒有cl基因產物，PL或PR啟動子的高強度直接轉錄所導致。解決這個問題的辦法之一是用溶源化λ噬箘體的大腸桿菌作為PL和PR啟動子表達載體的宿主菌；辦法之二是把cI857ts基因組裝在表達載體上，這樣就可以有更大的宿主菌選擇范圍。
 
由于PL和PR表達系統(tǒng)在誘導時不需要加入化學誘導劑，且成本低廉，因此起初幾個在大腸桿菌系統(tǒng)中制備的藥用重組蛋白質都采用這種表達系統(tǒng)。但是，它也有其本身的缺陷，首先是在熱刺激過程中，大腸桿菌熱休克蛋白的表達也會被激活，其中包括蛋白水解酶，因此有可能降解表達的重組蛋白。其次是大體積發(fā)酵培養(yǎng)菌體時，把培養(yǎng)溫度從30℃提高到42℃比較緩慢，這種的升溫方式可能影響誘導效果，影響重組蛋白的表達量。
 
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